ПРЕПАРАТЫ АНАТОМИЧЕСКИЕ
Спасибо нашим инвесторам из казино онлайн
ПРЕПАРАТЫ АНАТОМИЧЕСКИЕ
(от лат. ргаераго—приготовляю), все виды наглядных пособий, материалом для изготовления к-рых служат настоящие ткани, органы и части организма человека и животных. П. а. бывают микро – и макроскопические. Микроскопические препарат ы—см.
Гистологическая техника, Микроскопическая техника, Микрофотография.
—Основными требованиями к П. а. макроскопическим являются демонстративность и возможность хранить их неопределенно долгое время в состоянии, близком к их натуральному виду. Для сохранения П. а. предложено большое количество различных методов и их модификации. Каждый метод включает в себя ряд фаз, основными из к-рых являются: 1. Подготовка объекта (сюда входят препаровка, производство разрезов, уда-ление лишних тканей и пр.). 2. Обработка объекта различными хим. веществами или смесями их с целью фиксации, восстановления естественной окраски, прокрашивания тканей и пр. 3. Окончательный монтаж препарата. Сюда входят заключение в банки с консервирующими жидкостями, в герметически закрытые стеклянные камеры. Иногда препарат прямо высушивают, как напр. кости, конкременты, коррозионные препараты и т. д. Выбор метода изготовления П. зависит: 1) от целей и назначения данного препарата; 2) от характера объекта исследования и 3) от способа дальнейшей обработки и хранения П. Наиболее простым и дешевым способом является заключение объектов в формалин 5—10%-ный или спирт после предварительной фиксации теми же жидкостями. Существенным недостатком формалинового хранения является побурение в нем тканей, особенно богатых кровью, вследствие перехода НЬ крови в метгемоглобин. Поэтому формалин следует применять лишь в случаях, когда не преследуется цель сохранения естественной окраски в» препарате или при консервировании малокровных объектов (уродства, эмбрионы, гангрена легких и пр.).—Недостатки хранения в с п и р т е—обесцвечивание и сморщивание (богатых водой) тканей. Применяют спирт гл. обр. для сохранения мелких животных. Простым методом является
мацерация
(см.) и высушивание. Они применяются при изготовлении костных препаратов, при хранении. конкрементов. Для изготовления П. костей последние, предварительно освобожденные от мягких тканей, подвергают вымачиванию в воде, t° к-рой все Время поддерживается около 40— 45°, и держат их (меняя несколько раз воду) до полного отделения (отгнивания) мягких ча-. стей. Обычно на это уходит около 3—4 недель. Затем кости погружают в теплый 5—10%-ный раствор соды, высушивают и обезжиривают бензином или эфиром (лучше в специальных приборах). Обезжиренные кости вновь высушивают и белят либо на солнце при постоянной поливке их водой либо путем неоднократного погружения в 1—2%-ный раствор перекиси натрия с последующей промывкой и высушиванием. Лучшие кости получаются при обработке молодых и нежирных субъектов. Для разбора черепа по швам его полость набивают сухим горохом, затылочное отверстие закладывают щепочкой так, чтобы горох не высыпался, и череп погружают в воду. Горох, набухая, разрывает череп по швам. Старческие черепа для разбора не годятся. К более сложным методам относятся: 1) инъекция, 2) просветление, 3) коррозия, 4) окрашивание и 5) сохранение естественной окраски органов. Метод инъекции употребляют в тех случаях, когда в препарате желательно выявить кровеносную или лимф, систему, протоки желез и пр. (См.
Кровеносные сосуды,
методы исследования кровеносных сосудов,
Лимфатическая система,
лимфатические сосуды,
Герота метод, Легкие,
инфекции легких,
Печень.
) Метод инъекции часто применяют в ком – •бинации с препаровкой, просветлением и коррозией. При выборе способа инъекции следует учитывать величину объекта, состояние тканей, способ дальнейшей обработки и хранения препарата во избежание разрыва инъицируе-мой системы или растворения массы при последующей обработке объекта.—Метод просветления. Сюда относится такая обработка тканей, органов, а иногда и всего организма {животного), при к-рой изучаемый объект становится прозрачным. Чаще всего этот метод применяется в комбинации с инъекцией сосудов. Основан этот метод на применении к-т или щелочей или на пропитывании препарата жидкостями, коефициент преломления к-рых равен коефициенту преломления просветляемых тканей. Наибольшие заслуги в методике просветления принадлежатШпальтегольцу (см.
Шпальтегольца способ).
В основе просветления к-тами и щелочами лежит способность мягких тканей, в первую очередь соединительной и мышечной, под влиянием кислотных и ги
дро-ксильных ионов набухать, связывать воду и превращаться в желеобразную массу. Просветляющие свойства кислот нашли применение в приготовлении П. периферической нервной системы. Просветление в этих случаях ведется до известных пределов (следят за прорисовкой нервных волокон и узлов), т. к. при длительном действии кислоты наступает расплавление тканей. Из кислот наиболее употребительными являются уксусная и муравьиная (от
1/z%
ДО 3%), в зависимости от времени и объекта. – Хранение таких препаратов производится в 20—30%-ном спирту или в формалине. Просветляющие свойства щелочей нашли себе применение в способе Шульце (1897 г.) для определения точек окостенения плода.—М е т о д коррозии впервые был применен в 1672г. лейденским врачом Иоганном Скваммердаммом. Позднее разработан и описан Гиртлем. — См.
Кровеносные сосуды,
методы анат. исследования кровеносных сосудов. Метод окрашивания имеет целью контрастную цветную диференцировку различных элементов животного организма. В качестве «красок» применяют кармин, гематоксилин, Methylenblau, Fuchsin,.Eosin и соли металлов, напр. золота, серебра. Эффект окрашивания тканей •есть результат сложного взаимодействия краски и окрашиваемых тканей. Самый процесс окрашивания изучен весьма неполно и отрывочно. Метод окрашивания макро – и микроскопических величин введен недавно и разработан гл. обр. В. Воробьевым и его учениками. Наиболее распространенной является окраска нервной системы (вегетативная нервная система, отчасти периферические спинномозговые нервы и мозг). Окраска внутренних органов находится в стадии разработки и выработана
для
нек-рых из них (трахея, желудок, кишечник, мочевой пузырь, желчный пузырь). Для примера приведем нек-рые окраски. Окраска осмием производится путем помазывания нерва (стеклянной палочкой) 1%-ным раствором осмиевой кислоты. По мере окрашивания нерв ■отпрепаровывается и окраска продолжается дальше. При окраске золотом нервов внутренних полых органов орган промывается, помещается в слабый раствор (0,5%) муравьиной к-ты до легкого просветления, а затем в раствор золота (слабо соломенного цвета), к-рое после восстанавливается в слабых растворах Methylenblau или в настоях лимонной или апельсинной корки. Препараты сохраняют либо в глицерине либо они могут быть обработаны по Шпальтегольцу. Окраска метиленовой синькой требует предварительной промывки препарата простой или дест. водой, в зависимости от способа окраски. Препарат инъици-руется0,5—0,02%-ным раствором метиленовой синьки (в зависимости от метода), после чего препарат вынимают из трупа и погружают в слабый раствор той же краски. Способы окраски метиленовой синькой делятся на способы, годные для трупного материала, и способы для т. н. прижизненной окраски. Нужно отметить, что не все органы окрашиваются одинаково, и поэтому для надлежащей окраски для каждого органа вырабатывается своя методика. При изготовлении пат.-анат. препаратов широко применяют методы сохранения естественной окраски органов. Здесь дело касается гл. обр. сохранения цвета красящего вещества крови и жира. Поэтому объекты не должны перед процессом обработки приходить в соприкосновение с водой, т. к. она вызывает гемолиз. Сущность многих методов заключается в последовательном воздействии формалином, алкоголем и глицерином. В формалине НЬ крови превращается в метгемо-глобин, отчего орган принимает грязнобурую окраску. Последующая, обработка алкоголем переводит метгемоглобин в красную модификацию его—катгемоглобин. Способность формалина к диффузии может быть усилена различными примесями к раствору формалина, среди к-рых предложенная Пиком (Pick) искусственная карлсбадская соль является самой дешевой, а указанная Кайзерлингом (Kai-serling) уксуснокислая соль—самой надежной. Прибавление соли к гипотоничному раствору формалина предупреждает также выщелачивание им эритроцитов. Продолжительное пребывание объекта в алкоголе ведет к разрушению красящего вещества (происходит обесцвечивание) и растворению жира. Поэтому для постоянного хранения препарат переносят в глицерин, разбавленный раствором уксуснокислого калия; от действия чистого глицерина препарат сделался бы слишком прозрачным. Рецепты солевого формалина и глицерина—см.
Кай-зерлинга метод.
По Мельникову-Разведенкову, для раствора I берут: формалина 100
см3,
хлористого калия 5
г,
уксуснокислого калия 30
г,
воды 1 000
см3.
Для раствора III: глицерина 600
см3,
уксуснокислого калия 400
г,
воды 1 000
см3.
По Пику I: формалина 50
см3,
карлс-бадско
й соли (искусственной) 50г, воды 1000 ел*3. III раствор—III Кайзерлинга. В растворе I объекты остаются смотря по их величине от 1 до 2 суток, максимум 3 недель, пока они окончательно не профиксируются. Критерием законченной фиксации является то, что при сдав-лении из сосудов не должно вытекать красной крови. Для небольших объектов лучше пользоваться крепкими растворами. Для более крупных, как напр. печень, мозг, в целях более успешного проникания фиксирующей жидкости внутрь их следует брать растворы с содержанием формалина не более 5—8%. В нек-рых случаях, когда важно сохранить лишь внешний облик препарата, можно из разреза, сделанного через зафиксированный поверхностный слой, вычерпать часть непрофиксирован-ной массы. Если играет роль только поверхность разреза, то довольствуются вырезанным: Ill из органа куском в виде пластинки. При внесении препарата в фиксирующую жидкость ему придают то положение, в к-ром его желают сохранить. Так напр. отрезок кишки прикрепляют булавками к дощечке, к-рую потом опрокидывают, чтобы препарат оказался погруженным в фиксирующую жидкость. Трубчатые части органов или раскрывают и укрепляют их в таком положении или вкладывают в них вату. Для того, чтобы фиксирующая жидкость имела доступ к препарату со всех сторон, под него подкладывают вату и т. п. После того как обработка раствором I закончена, препарат промывают в воде, слегка обсушивают и погружают в алкоголь (96—97°). В алкоголе препарат оставляют до тех пор, пока он не примет прежней окраски (по возможности недолго!). В зависимости от величины объекта этот срок колеблется от
г/2
часа до 12 часов. Время пребывания в растворе III (глицериновая смесь) не ограничено. От внесенного с препаратом алкоголя раствор III мутнеет, поэтому по меньшей мере один раз он должен быть заменен свежим. Кроме вышеописанных способов, основанных на применении спирта как восстанавливающего естественную окраску органа, имеются другие методы сохранения естественной окраски без применения спирта. Основаны они на образовании из гемоглобина, под влиянием прибавляемого к раствору I хлорал-гидрата стойкого яркокрасного гемохромогена. При этих методах фаза II (проведение через спирт) отпадает, и препарат из раствора I (хлоралгидратом) после основательной промывки в воде (6-часовой) поступает в раствор III Кайзерлин-га. Иорес (Jores) для раствора I рекомендует на 1 000
см3
оригинального раствора Пика прибавлять 50
см3
насыщенного раствора хлоралгидрата в дест. воде. Отпадает проведение через спирт также при обработке препарата светильным газом или чистой окисью углерода, что дает образование яркокрасного и хорошо сохраняющегося СО-гемоглобина. По способу Шульца (Schultz) через жидкость Кайзерлинга I перед помещением в нее органа пропускают в течение 1 часа светильный газ, затем кладут в нее орган для фиксации и еще пропускают немного газа. После фиксации в газированной жидкости следует промывка органа в воде и заделка его в жидкость Кайзерлинга III. По Кернеру, органы и части их до фиксации подвергают действию окиси углерода, добываемой из серной к-ты при прибавлении к ней по каплям муравьиной к-ты; после этого идет фиксация в жидкости I Кайзерлинга или Мельникова-Раз-веденкова, промывка в воде и заключение в жидкость III или в желатину—агар-агар по Талалаеву. Хранение препаратов с сохранением естественной окраски органа производится в стеклянных 4-угольных банках. В качестве консервирующей жидкости берут раствор III (чистый). Помимо то го препараты можно хранить в виде пластинок, заключенных между 2 стекол. Шором предложен способ хранения в герметически закрытых стеклянных камерах без жидкости. Большие затруднения встречает консервирование мочевой к-ты и мочекислых солей (напр. при сохранении мочекислых инфарктов новорожденных или подагрических процессов, а также небольших отложений извести) вследствие содержания в продажном формалине муравьиной к-ты, к-рая растворяет эти соли. Поэтому такие объекты проще всего фик – сировать и хранить в 96°-ном алкоголе или же, профиксировав в спирту, перевести в чистый глицерин или же залить в желатину. При окончательном заделывании препаратов в банки их опускают прямо или же прикрепляют шелковыми нитками к стеклянным пластинкам (удобно пользоваться цветными стеклами— молочным, зеленым и пр.). Для большей демонстративности различных пат. каналов, отверстий, свищей в них вводят стеклянные палочки. Если желают укрепить в раскрытой полости имеющиеся там конкременты, их предварительно высушивают, а затем приклеивают желатиной (по
сле того как желатина застынет, на нее действуют 10%-ным формалином для устранения последующего растворения ее). Желатиной можно пользоваться и для наклейки на ткани этикеток с надписями, номерами. Если орган имеет наклонность всплывать (напр. легкое), то его укрепляют или к стеклянной пластинке или стеклянными палочками. Банки с монтированными указанным способом препаратами закрывают стеклянными пластинками (края пластинок не должны выступать). Для заклейки употребляют Менделеевскую замазку (125 частей желтого воска, 500 частей канифоли, 200 частей прокаленной мумии и 3—5 частей Льняного масла; варят до тех пор, пока, исчезнет пена). Иногда в препаратах, сохраняемых в глицериновой смеси, заводится плесень-(что возможно при неаккуратной методике), тогда банку необходимо открыть, препарат на короткое время положить в формалин, а затем заключить его в новую банку со свежим раствором III. Последнее время с целью изучения как нормальной, так и пат. анатомии применяется метод Рентгена. Особенно большое значение он приобрел в топографической анатомии. Заполняя с этой целью сосуды и другие трубчатые системы контрастным веществом, получают тончайшие картины этих систем в целом организме или в отдельных его частях. В пат. анатомии рентгенограммы с трупа, подлежащего вскрытию, часто могут открыть процессы там, где-они меньше всего подозревались, напр. в костях. Если известен измененный орган, то пользование рентгеном может облегчить диагностику локализации и распространения процесса. В последнем отношении заслуживает внимания методика, предложенная д-ром Франк-Каме-нецким и разработанная им совместно с д-ром Шлапоберским. Указанные авторы получали красивые препараты—снимки с различных, гл. обр. опухольных процессов, предварительно-подвергая объект обработке контрастной жидкостью. Эта жидкость составлялась по принципу употребляемых в гистологии яркокрасящих красок с той только разницей, что вместо органической краски бралась неорганическая соль, связанная с протравой; при просвечивании таких^ препаратов богатые хроматиновой субстанцией» части препарата давали контрастные тени. Методика этого способа следующая: 1) фиксация исследуемого объекта в формалине (пре – . парат должен иметь по возможности одинаковую толщину, при исследовании массивных органов, напр. грудной железы, делают пластинчатый срез не толще 1
см);
2) промывка объекта в текучей воде (х/2—1 час); 3) погружение объекта в жидкость следующего состава: Na-trii bromati 500,0, Liq. Ferri sesquichlorati 40 0, Acidi muriatici puri 10,0, Spiritus vini rectif., Aquae destillatae aa 725,0 (готовый раст – 113 ПРЕПАРАТЫ вор имеет темнокоричневую окраску и может применяться много раз). После рентгенографии препарат промывается водой (72—1 ч.) и остается годным для микроскопического исследования. Особенно демонстративные – препараты-снимки получаются при изучении опухолей желудка, грудной железы и ыек-рых других. Изготовление П. а. производится в различных научных ин-тах, гл. обр. при кафедрах описательной, топографической и пат. анатомии, ‘ал-акже при прозектурах б-ц, в хир. отделениях и зоологических кабинетах. Большое место в смысле изготовления П. а. в последние годы занимает Центральный научно-исследовательский ин-т наглядных и учебных пособий по медицине, биологии и санитарной культуре (см.
Наглядный метод).
Изготовление анатомических препаратов требует помимо знания музейного дела также знания нормальной и патологической анатомии, почему должно производиться либо врачами либо специально обученными препараторами-музеистами, в последнем случае обязательно под руководством и контролем врача. Важнейшим назначением анатомических препаратов является использование их как наглядного пособия при изучении и преподавании соответствующих дисциплин в вузах, техникумах и в средних школах. Широкое распространение анатомические препараты получили у нас в деле санитарного просвещения. Гистологические препарат ы—см.
Гистологическая техника.
&
а. Кестнер.
Лит.:
Абрикосов А., Техника’пат.-анат. вскрытий трупов, Москва, без года; Воробьев В., Анатомия человека, т. I, Москва, 1932; Кернер, Лабораторная практика, 1929; Талалаев В., Патологическая техника, Лаборат. практика, 1929, № 7; Frank-Ka-menetzky L., TJber Rontgenographie einiger patholo-gisch-anatomischer Praparate, Centrbl.
i.
allgem. Pathol. u. path. Anat., B. LV, 1932; Kaiserling C, Riick-blicke auf Theorie und Praxis farhigen Konservierung, Virch. Arch., B. CCXXXVII, 1922; Kerner, Reines Kohlenoxygen als Fixierungsmittel fur Blut-und G-ewer-bepigmente, Centrbl. f. allgem. Pathol. u. path. Anat., Bd., XLVI, 1929; Schultz, tJeber ein neues Verfah-ren der farbenerhaltenden Konservierung, ibid., B. LXIV 1929; «Worobiew G., Die Nerven des Herzens, Med. Klin., B. XXII, 1926.